Agritrop
Accueil

Maîtrise de la reproduction artificielle de deux poissons-chats Pangasius bocourti et P. hypophtalmus élevés en cages flottantes dans le delta du Mekong Vietnam

Eeckhoutte Philippe. 1996. Maîtrise de la reproduction artificielle de deux poissons-chats Pangasius bocourti et P. hypophtalmus élevés en cages flottantes dans le delta du Mekong Vietnam. Paris : INA-PG, 70 p. Mémoire DAA : Sciences et techniques des productions animales : Institut national agronomique Paris-Grignon

Mémoire
[img]
Prévisualisation
Version publiée - Français
Utilisation soumise à autorisation de l'auteur ou du Cirad.
ID594002.pdf

Télécharger (5MB) | Prévisualisation

Encadrement : Lazard, Jérôme ; Cacot, Philippe

Résumé : Au Vietnam, la filière d'élevage en cages de P. bocourti et hypophtalmus générait, en 1993, un bénéfice de près de 70 millions de francs pour une production de l'ordre de l 5 000 tonnes. Elle faisait vivre directement plus de 3 000 personnes. Le cycle d'élevage de ces poissons est basé sur la capture dans le Mékong de juvéniles : environ 26 millions d'alevins sont nécessaires chaque année pour alimenter la filière. Or le prix de l'alevin ne cesse d'augmenter, alors que les frais d'achat de ces juvéniles peuvent représenter jusqu'à 50% des charges de fonctionnement d'une unité de production. Ainsi, la maîtrise de la reproduction artificielle de ces poissons apparaît vitale pour la pérennité de l'espèce. C'est un des objectifs du programme de recherche en coopération que mène le ClRAD dans ce pays. Or, en avril 1995, Philippe Cacot, al locataire de recherche au CIRAD, réussisait pour la première fois la maîtrise de la reproduction de P. hocourti. Pour autant, des recherches supplémentaires en particulier dans la compréhension du fonctionnement de l'organe reproducteur mâle s'imposaient, car les inséminateurs vietnamiens n'hésitaient pas à sacrifier les géniteurs mâles lors des opérations de reproduction artificielles. Trois axes de recherche se dégagaient : • l'induction hormonale des géniteurs mâles, • la collecte et la préservation du sperme du fait de sa pollution par l'urine, • enfin, la gestion des gamètes lors de l'insémination. L'induction hormonale par l'HCG montre que la réponse est maximale 12 à 24 heures après injection tant en volume que en terme de concentration spermatique. Chez P. bocourti, en plus, une injection de LHRH associé à un antidopaminergique, le clompéridone, permet une spermiation, mais plus faible en intensité et plus tardive (48 heures) que dans le cas de l'HCG. Plusieurs solutions d'immobilisations ont été testées par mesure du taux de fécondation ou d'éclosion. L'osmolarité et le taux de dilution du sperme dans ce liquide ont été les facteurs étudiés. Ainsi, on utilisera donc comme liquide de conservation une solution tamponnée à pH 7 et de salinité respective à 12°/00 de NaCI pour P. bocourti et 9 pour P. hypophtalmus. Dans ces conditions, on peut espérer conserver le sperme 24 à 36 heures au frais sans que son pouvoir fécondant soit modifié. Les tests de motilité montrent que l'activité des spermatozoïdes est de courte durée après activation. Elle est de 57 secondes pour P. bocourti et de 45 s. pour P. hypophtalmus. Le maximum d'activité est observé 5 à 6 s. après activation. Ce palier est maintenu 5 à 6 s. chez P. bocourti et 10 à 11 s. chez P. hypophtalmus. Enfin, différentes solutions d'activation ont été étudiées. Elles nous conduisent à préférer à l'eau, une solution saline à 2°/00 NaCI et à pH 7. De plus, dans un souci d'économie du sperme lors de l'insémination, on suggère de pratiquer la fécondation à une dilution du sperme de 10-3.

Résumé (autre langue) : In Vietnam, Pangasius bocourti and hypophtalmus breeding in noating cages created in 1993 a 70-million FF-profit for a total production of 15 000 t. Three thousand persons lived directly from this breeding. Breeding's cycle of this two catfisfh is dependant on the capture of fingerlings in Mekong river : every year, Pangasius breeeding needs about 26 milions of fry. But fingerlings' price is going up, whereas their purchase's expense represents up to 50% of a noating cages' operating cost. Thus, control artificial propagation of this two fishes appears vital for channel's timelessness. I t was also one of the scientific research program in cooperation led by C IRAD in this country. In April 1 995, Philippe Cacot, scientific in C IRAD suceeded for the fïrst time in artificial propagation of P. bocourti. For all of that, research must be extensive, specially in understanding male reproductive organ working. Vietnamese inseminator didn't hesitate to sacrifice male genitors during propagation operation. Our research were developped in three direction • male's hormonal induction, • collect and preservation of sperm because of a urine's pollution, • gamete management during insemination. Response after HCG hormonal induction of spermiation is maximal between 12 to 24 hours after injection ; the volume of semen collected increases and also the concentration. ln P. bocourti, a Dompéridoe-LHRH-induced spermiation is less important in quantity than HCG's one, and the maximal response occurs 48 h. after injection. Different diluent for short-term preservation of P. bocourti and hypophtalmus semen were tested by fertilisation or hatching rate measure. Osmolarity and dilution rate of sperm in immobilizing extender were studied. So, we suggest to use as preservation diluent a pH 7 solution which NaCl concentration is 12 °/00 for P. bocourti and 9 °/00 for P. hypophtalmus. Under those conditions, we can preserve sperm 24 to 36 hours in liquid state at 4-5 °C without changing spermatozoa' fertilizing capacity. Motility test show that spermatozoa activity i s very short after activation: 57 seconds for P. bocourti and 45 seconds for P. hypophtalmus. Max imum activity is observed 5 seconds after activation and is going on 5-6 s. for P. bocourti and 10-11 s. for P. hypophtalmus. Finally, diluent for activating spermatozoa motility were studied. A 2 °/00 NaCl solution (pH 7) is becter than fresh water. To manage sperm during insemination, a 10-3 -final sperm dilution ratio must be used.

Auteurs et affiliations

  • Eeckhoutte Philippe, INA-PG (FRA)

Source : Cirad-Agritrop (https://agritrop.cirad.fr/594002/)

Voir la notice (accès réservé à la Dist) Voir la notice (accès réservé à la Dist)

[ Page générée et mise en cache le 2019-11-17 ]